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溶液 1mol/L乙二醇 1mol/L丙三醇 1mol/L葡萄糖 相对分子质量 62 92 180

溶血时间 2. 脂溶性大小对细胞膜透性的影响

(1) 编号的3支试管分别加入2ml 3mol/L的甲醇、乙醇、丙醇。 (2) 分别先后加入两滴血液,按住管口倒置一次。 (3) 观察溶血时间。

(4) 间实验结果记入下所示的表格中。 溶液 3mol/L甲醇 3mol/L乙醇 3mol/L丙醇 相对分子质量 32.04 46.07 58.0 分配系数 0.0097 0.0357 0.156 溶血时间

3. 电解质和非电解质溶液对细胞膜透性的影响

(1) 将试管编号,注明溶质名称及物质的量浓度。

(2) 按编号分别加入不同浓度的葡萄糖及氯化钠溶液2ml。 (3) 每管各加入两滴血液,按住管口,倒置一次。

(4) 室温放置15min,观察发生溶血的浓度,确定等渗浓度。 (5) 按下表记录实验结果。 (6) 计算等渗摩尔浓度。 溶质 葡萄糖 NaCl

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物质的量浓度/(mol/L) 1/8 1/9 1/10 1/12 1/13 1/14 1/16 1/18 实验十三 细胞电泳

一、实验目的:

了解细胞电泳的原理及意义,学习细胞(包括细胞器)电泳速度及其ζ电位的测

定方法。

二、实验原理:

所谓细胞电泳,就是将细胞制成悬浮溶液.使其单个游离的细胞分散于等渗

的介质中。在外电场的作用下,细胞在特殊的装置内发生运动.这种现象称作细胞电泳。

细胞表面具有一定的电荷(通常为负电荷),它能象无机离子一样均匀地分布在

介质中。细胞表面吸附了一层极薄的水膜,它与介质间存在着电位差,此电位差称为ζ电位。每种细胞在恒定的条件下(如温度、电压、电流,介质浓度,溶液的PH值等)其电泳速度和ζ电位十分稳定,但在各种有害因子,病理状态的影响下,可降低其表面电荷,所以电泳速度和ζ电位值也发生改变(降低)。因此,利用细胞电泳对研究生命结构的表面性质,鉴定细胞或单细胞有机体的机能和病理状态,具有重要的意义,是一种十分有用的方法。

有些细胞器(如叶绿体)也具有上述的类似的细胞特性,可进行与细胞电泳类似

的细胞器电泳。

三、实验用品:

(一)材料:鼠全血细胞。菠菜叶绿体

(二)用具:细胞电泳仪,光学显微镜,电子表,台微尺,目微尺,细胞电泳架, 电泳毛细管,吸血量管,洗耳球,盐桥等。 (三)试剂

l、生理盐水甘油溶液:O.9%NaCl,0.32M甘油溶液,每毫升加入4—5V (国际

单位)的肝素。混匀备用。

2、8%蔗糖甘油溶液:8%的蔗糖,O.32M甘油溶液,每毫升加入4—5V(国际单

位)的肝素,混匀后备用。

四、实验方法:

(一) 细胞电泳前的准备工作

l、目微尺校正:与实验二“台微尺与目微尺的校对”相同的操作。

2、毛细管l/10d层的测定:电泳毛细管的长度为6cm。内腔是正方形或长方形,

圆形等。在其中相对应的一对内壁中线处,各刻有一条与长轴平行的滚线,而两线之间的距离为电泳室的厚度d。 d的测量同实验二中“厚度的测量’’部分.然后将测得的d值除以lO,便求得了d/10层的刻度数,将微调回零后,再转动到上述刻度值,便是d/lO层的位置。

3、细胞(或细胞器)悬液调制,用血球计数板对悬液计数,然后调制细胞(或细 胞器)浓度,全血细胞约2000个/mm3,叶绿体为5000一10000个/nm3。 4、显微镜固定及毛细管和银电极的清洁:

(1)选可翻转的显微镜以免细胞在电泳时迅速下沉,脱离观察面。

(2)用肥皂水(最好用十二烷基磺酸钠)冲洗毛细管电泳室,然后用清水冲洗数

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次。

(3)用普通纱布将电泳架两端的银电极擦干净,以免正反两方向的电泳速度显著不 一样。

(二)细胞(或细胞器)电泳速度及ζ电位的测定:

1、根据所使用的输入电源,将仪器背面的电源选择钮“交流一直流”,调至所要

求的位置。

2、接通电源,打开电源开关,指示灯亮。

3、插入直流输出引线,并注意电极夹的正负极短路,以免损坏仪器。

4、将调整开关至“工作”档,换向开关至“正”档,然后调节“电压调节’’及 “电流调节”二旋钮,动物细胞电泳时,电压调至40伏,电流调至lmA;叶绿

体电泳时,电压调至55伏,电流以调至lmA。调好后再将开关推到“停止”档。

5、将制备的样品注灌毛细管电泳室,其灌注方法是:

(1) 将毛细管斜插入被测样品中,由于毛吸管吸引作用,则整个管腔内充满了被

测样液。

(2) 也可用橡皮胶头的吸吮作用将样品灌满电泳室。将注灌样品的毛细管水平移

至电泳架上,并夹紧,然后利用盐桥将细管与银极接通。

6、将电泳架移至显微镜载物台上,调整焦距,使焦面落在管腔的d/lO—d/15

处。为了对照可测d/2处的电泳速度。 7、通过直流输出引线夹,分别与两极接通。 8、测量

(1) 将开关调至“工作”档,再调节电压使其达到原来(即操作4中所调)的水平,

由于电场作用,在视野内可观察到管腔内细胞的移动。记录某个细胞通过目微尺2格的时间。

(2) 将开关调至“停止”档,细胞即停止移动。

(3) 将换向开关调至“负”处,调整高速开关调至“工作”档,由于电流方向变 更,则细胞向相反方向移动,此时再选择一细胞按上述方法,记录下电泳时间。 (4) 如此反复测量多次,分别记录实验数据。

(5) 实验结束后,将电压及电流二钮调回到“0”处,调整开关至“停止”处,并

断开电源;将毛细管洗干净,同时将电极擦净,放回原处,显微镜恢复到直立状态。

9、电泳速度计算:根据所测目微尺的实际刻度值,计算出每次的电泳距离S,将 所测电泳距离的总和除以所测时间的总和,得出电泳的平均速度,以下式表示:

s1+ s2+ ……+ sn W= =∑s/∑t t1+ t2+ ……+ tn

一般s以cm计算,t以秒计算

10、ζ电位的计算:根据所测电泳速度,可用下式求得ζ电位:

w×r ζ=140× v w:cm/秒; r:cm; v:伏特; ζ:伏特

五、作业:

1、根据实验数据,求出鼠的全血细胞和叶绿体的电泳速度和ζ电位。

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2、全血细胞在蔗糖和生理盐水的肝素甘油液的两种介质中时,其电泳速度有无

差别。

附:材料悬液的制备及盐桥制备法。 一、悬液制备:

1、鼠的全血细胞悬液制备 、

用微量吸取全血10mm3,吹于装有lml生理盐水肝等甘油液,或8%蔗糖肝

等甘油液小管中,吹气使之混匀。 ’ 2、菠菜叶绿体悬液制备

参考实验六“叶绿体分离”部分 二、盐桥制备:

称取9gNaCl加蒸馏水100ml,溶解后,加0.9g琼脂加热溶化,不断用玻棒搅

动,直至全部溶化,此时将已洗净凉干的塑料管插入溶液内,使管腔内部全部溶液充满。不得留有气泡,冷却后取盐桥存于9%的Nacl液中备用。

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