南师大蛋清中提取溶菌酶实验 - 图文 联系客服

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蛋清中提取溶菌酶

南京师范大学生命科学学院 姓名:穆旭 学号:09130333 摘要:本实验通过离子交换层析提取蛋清中的溶菌酶,掌握静态和动态离子交换的方法;

和从生物材料中提取活性蛋白质方法,并用超滤法分离溶菌酶和盐析浓缩溶菌酶,掌握超滤分离技术的原理和操作。并且用SDS-PAGE检测溶菌酶的纯度和含量,从而掌握SDS-PAGE的原理和操作。

关键词:溶菌酶,柱层析,离子交换树脂,超滤,盐析,SDS-PAGE

研究材料与实验方法 1.柱层析前的准备工作 实验材料:

树脂:724型阳离子交换树脂、层析柱:φ1.6cm×30cm、溶液:0.1M NaOH,0.1M HCl、其他材料:布氏漏斗,抽滤瓶,铁架台,恒流泵,核酸蛋白检测仪等。 1.1预处理724型阳离子交换树脂

碱-酸-碱的方法(Na型),每次用0.1N NaOH或者0.1N HCl溶液(体积约为树脂的2—3倍)浸泡树脂10—15min后,都要用蒸馏水将碱液、酸液冲洗掉。 1.2装填离子交换层析柱(重力沉降法)

固定层析柱,保持层析柱垂直;将蒸馏水倒入层析柱中,以排出管道中的空气,当蒸馏水高度约为层析柱高的一半时,将层析柱下端的塑料管夹紧;用玻璃棒将树脂搅拌均匀,倒入层析柱内,松开下端的塑料管,树脂自然沉降,最后保持蒸馏水面高于树脂表面约2cm。

1.3配制0.1M磷酸钠缓冲液pH7.0 先配制 1M Na2HPO4 57.7mL,1M NaH2PO4 42.3mL将两者混合后稀释至1000mL,装于试剂瓶中。

1.4平衡离子交换树脂

0.1M磷酸钠缓冲液恒速缓慢流经树脂,直至流出液的pH值与缓冲液相同,平衡 结束。

2.柱层析法提取溶菌酶 实验材料:

起始缓冲液:0.1M 磷酸钠缓冲液(pH7.0)

洗脱液:50mM NaCl溶液200mL(溶剂:起始缓冲液)、500mM NaCl溶液150mL(溶剂:起始缓冲液) 再生溶液:0.5M NaOH溶液 仪器:磁力搅拌器等 其他材料:新鲜鸡蛋 2.1样品的预处理

取2个新鲜鸡蛋,在其一端敲一个小洞,收集蛋清,加入约其体积1.5倍的起始缓冲液,搅拌均匀,用4层纱布过滤除去不溶性物质,检查其pH值是否为7.0,否则用0.5M酸、碱调节。

2.2静态吸附和洗涤

①静态吸附溶菌酶:倾出层析柱中平衡好的树脂,倾去多余平衡缓冲液,将蛋清溶液倒入树脂中,在磁力搅拌器上轻轻搅拌,室温下搅拌吸附约45min,注意搅拌速度(勿起大量泡沫、勿打破树脂)。吸附结束,吸取 200μL上清于dorf管中、4度保存备用(标记“1”),倾倒上清。

②洗涤杂质:取与树脂体积相当的起始缓冲液搅拌洗涤树脂约5min,重复2次,每次洗涤后,吸取 200μL 洗涤液于 dorf管中、4度保存备用(标记“2”“3”),倾去洗涤液。 2.3动态洗脱

①用少量起始缓冲液将树脂调匀,重新装填层析柱,装填结束后,用起始缓冲液(用滴管沿层析柱内壁缓缓加入,勿冲击树脂面,高度约2cm即可)封闭树脂面,将层析系统组装好,核酸蛋白检测仪调基线(T档调“100”,A档调“0”),开始用 50mM NaCl洗脱液恒速洗脱杂质。(流速约2~3mL/min)。

②洗脱杂蛋白:洗脱开始,即计时,然后每隔2min,记录下吸光值和电导率值(使用LP层析系统的同学记录电导率值),当洗脱峰结束(流出液的吸光值从开始上升到下降,直至平稳),洗脱完成。在洗脱峰吸光值最大处收集少量洗脱液于 dorf管中,标记“4”)

③收集溶菌酶:更换 500mM NaCl洗脱液,同样记录,同样在吸光值最大处收集少量洗脱液于dorf管中,标记“5”),不同的是,此时是溶菌酶的洗脱峰,所以整个洗脱峰要收集于烧杯中,4度保存。 2.4再生树脂、洗涤管道、绘制层析图谱 用0.5M NaOH溶液(约1倍柱床体积)洗涤树脂,然后用蒸馏水将碱液冲洗干净,树脂回收于烧杯中,浸泡于蒸馏水中,保鲜膜蒙好,室温放置。 管道系统连接好,用约100mL 70%乙醇冲洗管道,冲洗层析柱。

以时间为横坐标,吸光值为纵坐标,绘制层析图谱,使用LP层析系统的同学,分别以吸光值和电导率为纵坐标。

3.超滤法分离溶菌酶和盐析浓缩溶菌酶 实验材料:

溶液:0.5M NaOH溶液

透析缓冲液:0.1M磷酸钠缓冲液(pH7.0)

其他材料:透析袋(8000~10000Da),超滤膜(30kD),固体硫酸铵,研钵,捣杵等。

3.1超滤分离(四组同学的溶菌酶洗脱液合并超滤)

将溶菌酶洗脱液以合适的流速经过超滤膜(进口压力不超过2.0bar),收集透过液,回流液(吸取200μL于dorf管中,标记为“6”),当透过液与回流液体积比约为3:1时,超滤可结束。 3.2盐析

在透过液中加入研细的固体硫酸铵粉末(边搅拌边加入),硫酸铵的终浓度为35%(即100mL 溶液中 35g 硫酸铵),室温下静置约20~30min,4度、10000rpm、20min。

3.3透析除盐

取少量 0.1M 磷酸钠缓冲液(pH7.0)溶解沉淀,装入透析袋中,置于适量的0.1M 磷酸钠缓冲液室温下搅拌透析过夜,次日更换缓冲液继续透析24h。透析结束后,将透析袋内的溶菌酶样品装入离心管中,4度保存备用(标记“7”)。

4.SDS-PAGE检测溶菌酶的纯度和含量 实验材料:

制胶的试剂:30%胶贮存液:丙烯酰胺(Acr):甲叉双丙烯酰胺(Bis)= 29:1

避光保存 神经毒 加速剂:四甲基乙二胺(TEMED)剧毒 催化剂:10%过硫酸铵(AP )新鲜配制 变性剂:10%SDS 室温保存

缓冲液:2×样品缓冲液: 100mmol/L Tris-HCl 4%SDS 0.2%溴酚蓝 20%甘油 200 mmol/Lβ-巯基乙醇 pH6.8

凝胶缓冲液:1.5M Tris-HCl pH 8.8,0.5M Tris-HCl pH6.8

10×电泳缓冲液:250mmol/L Tris-HCl 2.5 mmol/L 甘氨酸 1% SDS pH8.3 4度保存

染色液:考马氏亮蓝 R250 染色液 仪器:垂直电泳系统

4.1配制分离胶12%

各种溶液在洁净干燥的烧杯中混合均匀,勿使胶液产生大量气泡,迅速沿玻璃板边缘加入胶液,至短板约2/3高处,灌注胶液时避免混入气泡,迅速加入去离子水至短板顶端,覆盖住胶面,待凝胶聚合,倒去水层,并用滤纸将水分吸干。 4.2配制浓缩胶5%

迅速沿玻璃板边缘加入胶液至接近顶部,斜插入“梳子”,确保“梳齿”底端无气泡,和“梳子”水平。

4.3加入1×电泳缓冲液

加入约200mL 1×电泳缓冲液,使凝胶上、下端都浸泡在电泳缓冲液中,并且内槽缓冲液高于外槽;

确保加样孔内无无气泡,以保证电流畅通。 4.4制备样品

(1)将15μL样品与15μL 2×样品缓冲液在dorf管中混合均匀,100度煮沸