食品化学基础实验汇总 - 图文 联系客服

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1.标准蛋白质:5种蛋白质混合标样,分子量15kd、29 kd、45 kd、66 kd、97 kd、205 kd 2.30%丙烯酰胺溶液:丙烯酰胺29.2g,甲叉双丙烯酰胺0.8g,加水至100ml,棕色瓶4℃ 保存。

3.分离胶缓冲液(1.5mol / L Tris , pH8.7 ) Tris 15.17g,适量水溶解,然后用lmol/ L HCI 调pH 值至8.7,定容至100ml。 4.浓缩胶缓冲液(0.5mol / L Tris-Hcl , pH6.8 ) Tris 6.06g ,适量水溶解,然后用 lmol / L HCI 调pH 值至6.8,定容至l00ml。

5.电极缓冲液Tris 6g , Gly28.8g , SDS 2g ,去离子水溶解后,用Hcl 调pH 值至8.3,水定容至2000ml 。

6.10%SDS:取10g SDS,加水至100ml,完全溶解后室温保存。 7.10%过硫酸铵溶液(AP):临用前现配。

8.考马斯亮蓝染色液:0.1% 考马斯亮蓝R250、50% 乙醇、10% 冰醋酸,2000ml 9.脱色液:10% 乙醇、10% 冰醋酸,5000ml。 10.提取缓冲液:浓缩胶缓冲液稀释10倍

11.样品缓冲液:H2O 24ml,浓缩胶缓冲液12ml、甘油16ml、10%SDS 32ml,2-巯基乙醇4ml,溴酚兰0.08g。

12.TEMED(四甲基乙二胺)

13.2%琼脂2g 琼脂加电极缓冲液100 ml,水浴中溶化。 【操作步骤】 1.安装制胶模具。玻璃板要先用洗液浸泡, 然后用热水冲洗, 再用蒸馏水冲洗, 直立干燥。洗净的玻璃板装入硅橡胶套内, 垂直地固定在两半槽之间。注意在固定时要按照一定的顺序( 对角线方向) 同时拧动固定螺丝, 用力要均匀, 不能用力过猛或先拧紧一个再拧第二个, 否则电泳槽受力不均,会将玻璃板压碎或者造成胶液渗漏。电泳槽装好后, 将溶化的1.5% 琼脂注入背面槽内的小池中, 使胶池的下部凝成0.5 cm 厚的琼脂层, 备下一步使用。

2.根据所测蛋白质的相对分子量范围,选择某一合适的分离胶浓度。按下表所列的试剂用量配。本实验配制10%分离胶,溶液在加入过硫酸铵与TEMED前应抽气,制胶过程防止空气混入。加入过硫酸铵后迅速混匀,灌胶。

分离胶的配制

试剂(ml)/分离胶浓度 H2O 30%丙烯酰胺 分离胶缓冲液(pH8.8) 10%SDS TEMED 10%过硫酸铵 总体积 7.5% 4.90 2.50 2.50 0.10 0.02 0.5 10ml 10% 4.10 3.00 2.50 0.10 0.02 0.5 10ml 15% 2.40 5.00 2.50 0.10 0.02 0.5 10ml

将分离胶混匀后立即灌注于玻板间隙中,上层小心覆盖一层乙醇。将胶板垂直放于 室温下,待分离胶聚合完全后,倾去乙醇并用滤纸吸干。 3.浓缩胶的制备

按下表配制浓缩胶,将浓缩胶混匀后直接灌注在已聚合的分离胶上,立即插入梳子, 将凝胶垂直放于室温下聚合。本实验配制4%浓缩胶,要求同分离胶配制。

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浓缩胶的配制

试剂(ml)/分离胶浓度 H2O 30%丙烯酰胺 浓缩胶缓冲液(pH6.8) 10%SDS TEMED 10%过硫酸铵 总体积 3% 3.2 0.5 1.25 0.05 0.05 0.3 5ml 4% 3.05 0.67 1.25 0.05 0.05 0.3 5ml 6% 2.7 1.0 1.25 0.05 0.05 0.3 5ml 4.样品提取与预处理:取鹰嘴豆粉0.5g,5ml提取液匀浆,12000rpm离心5mins,上清液0.25ml与等体积样品缓冲液混合,100℃加热5分钟。

5.待浓缩胶聚合完全后,小心移出梳子,上下槽各加入电极缓冲液。 6.加样:用微量进样器加样。每个样品孔加入30ul样品。

7.电泳:浓缩胶:15mA;分离胶:30~50mA或100~150V。直至溴酚蓝达到距胶底部2cm,关闭电源。(回收电极缓冲液!可反复使用3次)

8.染色:从电泳装置上卸下玻板,小心橇开玻板取出凝胶,直接将胶片浸泡在考 马斯亮蓝染色液的染色盒中。95℃水浴中染色10min。 或在100℃水浴中分别染色 脱色处理同上。(染色液回收使用!)

9.脱色:移出凝胶放入脱色液中,每次95℃水浴中脱色5min,更换2次脱色液至本底无色为止。

10.结果:绘制电泳谱图或以照片形式打印出。标明溴酚蓝前沿和电泳方向。 10.MW 的计算

用直尺分别量出样品区带中心及染料与凝胶顶端的距离,按下式计算: 相对迁移率(mr )=样品迁移的距离(cm)/染料迁移距离(cm)。

以标准蛋白质的相对分子质量的对数对相对迁移率作图,得到标准曲线。根据等测样

品的相对迁移率,从标准曲线上查出其相对分子质量。

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