发布时间 : 星期六 文章水杨酸、柠檬酸对菊花保鲜过程中生理特征的影响更新完毕开始阅读ae93671a0b1c59eef9c7b43d
王茹华在2013年研究了不同浓度的柠檬酸对切花菊瓶插品质和生理特性的影响，探求了不同浓度的柠檬酸对于切花菊的不同保鲜效果，结果表明,50 mg/ L柠檬酸处理下，能够增大切花菊花径，促进花枝吸水，增加切花菊花瓣中花青素和叶片中叶绿素的含量，并维持细胞膜的稳定性，从而增加了对于鲜切菊的保鲜
[3] 时间。
水杨酸、柠檬酸对于鲜切花的保鲜具有一定作用，本实验就主要依赖水杨酸、柠檬酸配臵成不同浓度梯度的保鲜剂，对秋菊鲜切花进行处理，旨在探求保鲜效果最好的保鲜剂及其最佳浓度。
2 材料与方法
2.1实验材料
秋菊鲜切花购买于芜湖市花卉市场。 2.2实验方法 2.2.1保鲜剂配置
配臵不同保鲜剂处理秋菊鲜切花，实验所用基础保鲜剂配方为10 g/ L蔗糖+5 mg/ L氯化钙+50 mg/ L青霉素+蒸馏水，水杨酸设臵2个浓度：50 mg/ L和100 mg/ L，柠檬酸设臵2个浓度：50 mg/ L和100 mg/ L，一共分组为1个对照组（CK）和4个实验组，如下： CK：蒸馏水(空白对照)
B：10 g/L蔗糖+5mg/ L氯化钙+50 mg/L青霉素+50 mg/L 水杨酸+蒸馏水 C：10 g/L蔗糖+5mg/ L氯化钙+50 mg/L青霉素+100 mg/L水杨酸+蒸馏水 D：10 g/L蔗糖+5mg/ L氯化钙+50 mg/L青霉素+50 mg/L柠檬酸+蒸馏水 E：10 g/L蔗糖+5mg/ L氯化钙+50 mg/L青霉素+100 mg/L柠檬酸+蒸馏水 2.2.2处理方法
2013 年11月在安徽师范大学生科院实验室内，将新买的秋菊鲜切花进行修剪, 留35 cm 长，将基部斜剪, 除去瓶口以下的叶片。将菊花插入500 mL 锥形瓶中，每个处理组三次重复，每个重复3 枝秋菊，培养在不同的保鲜剂内。臵于室内通风良好、散射光充足、无直射光处。
将相应的保鲜剂对秋菊鲜切花处理72h（三天），将各瓶保鲜剂倒去，各加入200ml蒸馏水，每天对各瓶秋菊鲜切花换水处理，并定期对各组秋菊鲜切花的叶片和花瓣进行取材，装袋臵于冰箱保存。
2014年4月，取出冰箱的秋菊鲜切花材料，进行各项生理指标的测定。 2.2.3测定生理指标
光合色素：参照沈伟其的方法提取叶绿素。取 0. 1 g 放入 10 mL 混合提取液 (乙醇：丙酮= 1：1) 中，在黑暗下浸泡提。以提取液为对照，取浸提液分别在 752 型分光光度计上测定D645、D663、D470，计算叶绿素含量: 叶绿素 a (mg·g－ 1) = (12. 7 × D663－ 2. 69 × D645×v / (1 000 × w); 叶绿素 b ( mg·g－ 1) = (22. 9 ×D645－ 4. 68 × D663) × v / (1 000 × w)；
总叶绿素（CT）=Ca+Cb
类胡萝卜素（Cx.c）=1000A470－3.27Ca－104C3/229 v / (1 000 × w)。 其中: v 为提取液的体积 (mL); w 为所取样品的鲜重 (g)
可溶性糖：采用恩酮比色法。吸取提取液 0. 5 mL 于 20 mL 刻度试管中 (重复 3 次)，加蒸馏水1. 5 mL，再0. 5 mL蒽酮乙酸乙酯试剂和5 mL 浓 H2SO4，充分振荡，立即加入沸水浴中准确保温 1 min，自然冷却至室温，以空白 (2 mL 水 + 0. 5 mL 蒽酮乙酸乙脂 + 5mL 浓 H2SO4) 作参比，630 nm 比色，测定吸光度，并通过标准曲线计算可溶性糖的含量。
超氧化物歧化酶（SOD）：称取叶或花0.200g，于预冷的研钵，加预冷的磷酸缓冲液，（pH=7.8），冰浴研磨，转移至离心管，总体积为1.5ml。4度，10000r/min,离心20min，上清液为酶粗提取液，进行显色反应，以不照光的对照管设空白，560nm比色，计算酶的活性单位。
过氧化物歧化酶（POD）：采用愈创木酚法测定过氧化物酶（POD）活性；采用氮蓝四唑法测定超氧化物歧化酶（SOD）活性（肖家欣，2010）， 470nm比色测定吸光度。POD酶活力单位=100OD*V0/(W*V*t)，其中：OD为对照管值减去测定的吸光度。V0为酶总提取液体积（ml），V 为测定时酶用量（ml），T为反应时间（min）。
3 结果与分析
3.1不同浓度水杨酸、柠檬酸处理对叶片内光合色素含量的影响
由表1可知，在瓶插期前期，各实验组的光合色素含量均高于CK，其中B组Chla含量较高，为7.32 mg/g，高于CK 2倍多，高于其他各对照组1倍左右；Chlb含量：实验组B、C、D、E的基本接近，均高于CK近1倍；Chl(a+b)含量：各实验组均高于CK，其中B组Chl(a+b为9.60 mg/g，高于CK2倍多；Cx.c含量：各实验组均高于CK，其中B组为0.88 mg/g，高于CK 2.52倍多。
表1不同浓度水杨酸、柠檬酸处理对叶片内光合色素含量的影响（mg/g）
Tab.1 The effect on chlorophyll in the leaves treated with different
concentrations of SA and CA(mg/g)
10月3
Chla Chlb Chl(a+b) Cx.c
10月7日
Chla Chlb Chl(a+b)
CK 1.90 0.80 2.69 0.25 8.57 3.00 11.59
B 7.32 2.27 9.60 0.88 3.97 2.49 6.46
C 3.16 2.44 5.60 0.52 10.39 5.68 16.07
D 3.44 2.03 5.47 0.51 6.89 2.69 9.58
E 2.49 2.44 4.93 0.45 8.09 4.53 12.62
Cx.c 0.19 0.62 1.49 0.88 1.18
四天后，各实验组的光合色素含量均高于CK，其中C组Chla含量较高，为10.39 mg/g，高于CK约 21.24%；Chlb含量： C组的较高， 高于CK约 89.33%； Chl(a+b)含量：实验组C、E组高于CK，C组为16.07 mg·g，高于CK约38.65%，而B、D组低于CK，其中B组Chl(a+b为6.46mg/g，低于CK约 44.26%；Cx.c含量：各实验组均高于CK，其中C组为1.49 mg/g，高于CK 6.84倍之多。
前后两次取材测得光合色素含量比较，其中CK 的Chla、 Chlb和Chl(a+b)含量均升高，Chla含量增长较快，从1.90 mg/g上升至8.57mg·g，增加了3.5倍之多，而Cx.c含量降低了，从0.25mg/g减少至0.19mg/g，降低了24.00%。B组的Chla Chl(a+b)和 Cx.c含量均降低，其中Chla含量减少较多，从7.32 mg·g减少到3.97 mg/g，降低了接近一倍，而Chlb含量升高，从2.27mg/g升高至2.49mg/g，增加了9.69%。C组各光合色素含量均升高，其中Chla含量升高较多，从3.16mg/g升高至10.39mg/g，增加了2.89倍之多。D组各光合色素含量均升高，其中Chla含量升高较多，从3.44mg/g升高至6.89mg/g，增加了约1倍。E组各光合色素含量均升高，其中Chla含量升高较多，从2.49mg/g升高至8.09mg/g，增加了约2.25倍之多。
3.2不同浓度水杨酸、柠檬酸处理对叶片和花内可溶性糖含量的影响
由表2可知，在瓶插期间秋菊叶片的第一次取材中，相对于CK，B、C、D、E组的可溶性糖含量均高于CK，其中B组为9.30 mg/g，高于CK约1.85倍。第二次取材中可知，B、C、D组可溶性糖均高于CK，其中B组可溶性糖含量最高，为9.21 mg/g ，高于CK约64.46%，E组可溶性糖含量最低，为1.01 mg/g，低于CK 81.96%。
前后两次取材测量比较，CK和D组可溶性糖含量呈升高趋势，分别升高了71.78%和20.00%，而B、C、E组可溶性糖含量均降低，其中B组可溶性糖含量降低比例较少，从9.30 mg/g 降低至9.21 mg/g，降低了0.97%，E组降低比例最大，从5.96 mg/g降低至1.01 mg/g，降低了约83.05%。
表2不同浓度水杨酸、柠檬酸处理对叶片和花内可溶性糖含量的影响(mg/g) Tab.2 The effect on soluble sugar content in the leaves and flowers treated with
different concentrations of SA and CA(mg/g) 叶
10月3日 10月7日
花
CK 3.26 5.60
B 9.30 9.21 1.99 1.37
C 7.70 6.58 1.19 1.02
D 6.65 7.98 1.27 1.19
E 5.96 1.01 0.83 0.55
10月10日 0.27 10月17日 0.12
瓶插前期，B、C、D、E组秋菊花内可溶性糖含量均高于CK，其中B组为1.99 mg/g，高于CK约6.37倍。E组最低，为0.83 mg/g，高于CK约2.07倍。
瓶插后期，B、C、D、E组花内可溶性糖含量均高于CK，B组可溶性糖较高，为1.37 mg/g，高于CK 10.42倍，E组最低，为0.55 mg/g，高于CK约3.58倍。
前后两次取材测量比较，所有组可溶性糖含量均呈降低趋势，其中其中D组降低比例最小，从1.27 mg/g降低至1.19 mg/g，只降低了约6.30%，C组降低比例较小，从1.19 mg/g降低至1.02 mg/g，降低了14.29%。 3.3不同浓度水杨酸、柠檬酸处理对叶片SOD活性的影响
表3不同浓度水杨酸、柠檬酸处理对叶片SOD活性的影响（U/g） Tab.3 The effect on the activity of SOD content in the leaves treated with
different concentrations of SA and CA(U/g)
叶
10月3日 10月7日
CK 243.76 155.90
B 179.55 102.04
C 205.04 55.13
D 224.49 140.42
E 261.54 228.20
由表3可知，瓶插早期，秋菊叶片的第一次取材中，E组的SOD活性高于CK，为261.54 U/g，高于CK约7.29%，B、C、D、组的SOD活性均低于CK，其中B组最低，为179.55 U/g，低于CK约26.34%。第二次取材中可知，E组的SOD活性高于CK，为228.20 U/g，高于CK约46.38%，B、C、D、组的SOD活性均低于CK，其中C组最低，为55.13 U/g，低于CK 64.64%。前后两次取材测量比较，所有组的 SOD活性均呈下降趋势，其中CK、B组D组和降低比例较小，分别降低了36.04%、43.17%和37.45%，而C组降低比例最大，从205.04 U/g降低至55.13 U/g，降低了73.11%。
3.4不同浓度水杨酸、柠檬酸处理对叶片POD活性的影响
表4不同浓度水杨酸、柠檬酸处理对叶片POD活性的影响（U/g） Tab.4 The effect on the activity of POD content in the leaves treated with
different concentrations of SA and CA(U/g)
叶
10月3日 10月7日
CK 67.87 97.22
B 274.04 314.29
C 254.72 99.53
D 414.29 178.90
E 189.32 190.91
由表4可知，在瓶插期早期，秋菊叶片的第一次取材中，所有实验组的POD活性均高于CK，其中D组最高，为414.29 U/g，高于CK约5.1倍，高于E组1.189倍。第二次取材中可知，所有实验组的POD活性均高于CK，其中B组的最高，为314.29 U/g，高于CK约2.23倍，C组POD活性最低，为99.53 U/g，比CK高2.38%。前后两次取材测量比较，CK、B、E组POD活性呈升高趋势，其中CK升高比例最大，从67.87 U/g升高至97.22 U/g，升高了29.35%，B组升高了14.69%，E组升高不明显，升高了0.84%，而C、D组POD活性均呈降低趋势，分别降低了60.93%和56.82%。