发布时间 : 星期日 文章水稻突变体介绍及鉴定(很详细)更新完毕开始阅读dfb5b405da38376bae1fae9a
RMD水稻突变体信息及基因型鉴定
1. 背景介绍：
突变体对于遗传学研究有着重要作用，随着拟南芥和水稻等物种全基因组测序的开展，人类积累了前所未有的基因序列信息，为了弄清这些基因序列的生物学信息，寻找该基因区段序列发生变异的突变体是阐释基因功能最直接最有效的方法。
植物在自然的环境条件下也会产生突变性状，早期普通正向遗传学研究往往通过寻找与某种生物学特性相关的突变体来发掘或定位某个特定基因。为配合植物功能基因组研究高通量的策略，构建水稻等物种的大型突变体库已成为必然，借助水稻全基因组测序信息、通过反向遗传学的手段大规模地筛选突变体库，理论上可以获得基因组中任一基因的突变体，最终实现阐释基因功能的目的。
2. 原理：
2.1农杆菌介导的T-DNA 插入
农杆菌是寄主范围非常广泛的土壤杆菌，它能通过伤口侵染植物导致冠瘿瘤 和毛状根的发生。1974从根癌农杆菌中分离出一种与肿瘤诱导相关的质粒，称为致瘤质粒（Tumor-inducing plasmid），简称Ti 质粒。Ti 质粒上存在一段DNA，能够转移并整合到植物基因组中，称为Transferred DNA，简称T-DNA。 研究发现，T-DNA 两端存在非常保守的同向重复的25bp 序列，分别称为左边界（LB）和右边界（RB）。T-DNA 的转移只与边界序列相关，尤其是RB，而与T-DNA区段的其它基因或序列无关。我们将T-DNA 区段上的致瘤基因和其它无关序列去掉，利用其转移的特性，实现农杆菌介导的T-DNA 转入水稻愈伤，从而构建水稻突变体库。大量研究表明，农杆菌T-DNA 整合到植物基因组中的位置是随机的，并且整合到植物基因组中的T-DNA 能稳定遗传。由于插入到植物基因组中的T-DNA 区段序列已知，这样随机插入到植物基因组中的T-DNA 类似于给植物基因“贴”了一个序列标签。我们利用这个标签，通过各类PCR技术最终可以获取其插入的位点。
2.2 水稻Tos17 反转录转座子
创造水稻突变体的另一种方法是利用植物的反转录转座子，它们是以 DNA→ RNA→DNA 的方式进行转座，在水稻上已发现大约40 种长未端重复的反转录转座子，它们是Tos1-Tos32，RIRE1-RIRE8，其中5 类被证明是有转座活性的，分别是Tos10、Tos17、Tos19、Tos25 和Tos27。这些反转录转座子只有在组织培养条件下才具备转座活性，其中Tos17 的转座活性最强，容易插入到富含基因的区域，因此可以直接用于创造插入失活的突变体库。利用含有Tos17 插入的水稻突变体库，可以进行突变性状的筛选，
Tos17 反转录转座子正成为水稻功能基因组研究的一个有力工具。由于Tos17 反转录转座子为水稻内源的转座子，不需要进行转基因的过程，而且平均每株含有8 个Tos17 个拷贝，在正常情况下能够稳定遗传，因此Tos17 转座子突变体库是水稻功能基因组研究的一个有用资源。但也有研究表明，Tos17 在转座过程中
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存在几类转座热点，它容易插入到与抗病相关基因及蛋白激酶基因中。同时，Tos17 插入突变体库中观察到的突变体大约只有10%的突变是真正由于Tos17插入造成，另外的突变可能是由于组织培养过程中体细胞变异造成的，也有可能是组织培养激活了其它类的转座子发生转座所致。
3. 水稻突变体库 3.1 水稻突变体库功能
由于T-DNA 在植物基因组中能稳定遗传，且拷贝数较低，对于突变体的遗传分析较容易。加之T-DNA 序列已知，一旦发现某个突变性状与T-DNA 共分离，则采用Tail-PCR、Inverse-PCR 或质粒拯救等方法很容易分离T-DNA 侧翼植物基因组序列。欲寻找某个基因的突变体，可以设计相应引物，采用Pool-PCR 的方法高通量地筛选突变体库。 另外，通过构建T-DNA 侧翼序列数据库，也可以大规模地寻找基因的突变体。 采用Tail-PCR 的方法分离T-DNA 插入突变体库的侧翼序列，有助于将T-DNA 插入位点在染色体上定位，寻找已知基因不同区段的突变体。此外，在T-DNA 区段构建Gene trap、Enhance trap 等元件后，还可通过检测报告基因来反映靶位点基因的表达模式。
3.2 遗传转化体系建立
农杆菌介导的转化主要依据 Hiei（1994）的水稻转化方法并有所改动。简单 流程如下：
菌株活化 ↓
愈伤诱导 → 继代 → 预培养 → 侵染 → 共培养 → 抗性愈伤筛选 → 分化成苗→ 生根 →炼苗移栽 粳稻品种愈伤组织诱导/继代、预培养/共培养及筛选培养基用N6 培养基，分 化和生根用MS 培养基（其成分见附录1）。
3.3 突变体库转化植株的编号
为了便于突变体库产生的所有信息如植株种子、T-DNA 侧翼序列、报告基因 的表达模式等的统一管理，本研究中水稻突变体库的管理参照统一的数据库管理 和编号方法进行，如编号“01Z11AB90”，“01”表示该突变体产生的年份为2001 年；“Z11”表示转化的野生型亲本为中花11 号，中花15 的编号则为“Z15”，“AB”表示不同英文字的组合，代表不同的区号；“90”为阿拉伯数字编号，表示同一小区内的顺序号，编号范围为“01-96”。
3.4 水稻突变体发芽：
由于突变体发芽率会普遍降低，我们建议发芽的方法是：首先取10-20粒突变体种子，采用常规催芽的方法，若最后突变体发芽率高于60%的，即可将余下的种子进行常规催芽。如果发芽率偏低，我们建议您采用组培发芽（具体方法见附录2）。
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4．突变体基因型鉴定
4.1 载体介绍
构建水稻T-DNA突变体库我们一共用过3个载体：pFX，pSMR和pEGFP。它们在结构上没有差别，仅在报告基因位置存在差异（图中蓝框），其余位置完全一样。 T-BORDER (R)CAT-1 IntronT-DNA为图中红线左侧。
GAL4/VP16载体 报告基因 6xUASpVS1 StaCatalase intronpFX GUS&GFP BoGUSpVS1-REPpSMR GUS
pEGFP GFP EGFPpBR322 bom sitepFX-E24.2-15RpBR322 ori因此，无论是哪个载体，
鉴定基因型的步骤都是一样的。 F1 oriAmpCAM RESISTANCE T BORDER (L)pUC oriPOLY A SITE
pLACHYG(R) GFPCAMV35S
载体左端测序引物：NTLB5 5’ AAT CCA GAT CCC CCG AAT TA 3’ 载体右端测序引物：PFRB4 5’ TGC AGG TTC TCT CCA AAT 3’
17741 bp4.2 基因型检测的原理如下：
对每个插入位点基因设计一对跨T-DNA或Tos17的基因组引物-Sense primer(S)和Antisense primer(AS)，通过这两条基因特异引物(S和AS)与一条载体上已的引物（primer A 或primer B）进行配对扩增，就能确定后代的基因型（见下图）。 1) 如果T-DNA或Tos17在某位点的插入是纯合的，当用基因组上一条引物(S或AS)和载体引物进行配对扩增时，能够得到目的条带。但是由于T-DNA或Tos17的插入使两条基因组引物(S和AS)间距太大，所以用两条基因组引物S和AS不能扩增出条带；
2) 如果该位点没有T-DNA或Tos17插入，当用两条基因组引物(S和AS)扩增时能够得到目标条带，但用基因组上一条引物(S或AS)和载体引物配对扩增时不能得到目标条带；
3) 如果T-DNA或Tos17在某位点的插入是杂合的，则用两条基因组引物(S和AS)以及一条基因组引物(S或AS)和载体引物的配对扩增都能得到目标条带。
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4.2 引物选择
农杆菌T-DNA整合到植物基因组中的位置是随机的，可能出现正向插入和反向插入两种情况，同时我们分离侧翼序列时根据使用引物的不同，会分离到T-DNA左端侧翼序列和右端侧翼序列。当我们拿到感兴趣的突变体的编号后，如何选择合适的引物组合来进行基因型的鉴定呢？ 第一步，检查T-DNA的插入方向
具体方法是：将突变体的侧翼序列在NCBI上进行比对，比对结果中会出现一个strand值（如下图红框显示）：
strand=Plus/ Plus，代表我们分离到的侧翼序列与基因组正义链匹配； Strand=Plus/Minus, 代表我们分离到的侧翼序列与基因组反义链匹配；
但是，侧翼序列在基因组上的正反向并不能代表T-DNA在基因组上的的插入方向，我们还需要通过分析当初分离侧翼序列时使用的是T-DNA的左端还是右端的引物，来确定T-DNA在基因组上的的插入方向。 第二步，确定侧翼序列是在T-DNA左端还是右端
具体方法是：我们的突变体有统一的编号，前缀表示分离的方法等（具体见RMD网站详细介绍），后缀显示的是分离侧翼序列时所使用的引物（见下图红框，测序时即可使用该引物）。如果我们使用引物NTLB5，代表分离得到的是T-DNA的左端序列，如果我们使用引物PFRB4，代表分离得到的是T-DNA的右端序列，
第三步，T-DNA在基因组上的的插入方向
根据第一步和第二步的结论，我们即可确定T-DNA在基因组上的的插入方向，并选择合适的检测基因型的引物（结论见表一）。 表一： 分离侧翼序列引物 strand=Plus/ Plus Strand=Plus/Minus NTLB5分离 PFRB4分离
反向插入 正向插入 正向插入 反向插入 4